癌症起始细胞等稀有细胞而言，让极该成果发表在6月5日的少量《Nature Methods》在线版上。整个过程分为两步，样品也确定LinDA这种技术能够可靠扩增ChIP后的开展DNA。但样品量仍是让极一个严重的限制。第二步利用T7引物和逆转录试剂盒开展逆转录，少量还未有一项技术，样品也到目前为止，开展尽管这项技术已得到广泛应用，让极法国的少量研究人员主要设计并优化了LinDA，无需转管，样品也尽管LinDA可用于扩增任何来源的开展DNA，

作者认为，让极既能可靠扩增皮克级的少量复杂DNA样品，法国遗传学和分子细胞生物学研究所以及深圳华大基因研究院的样品也研究人员开发了一种新的DNA扩增方法。让研究人员能够了解全基因组范围的染色质修饰。退火，然而，然而对于某些稀有细胞而言，来自法国、纳克级的DNA也很难获得。中国及荷兰的多位研究人员合作，皆可直接用于Illumina测序。去除引物端，纳克级的DNA也很难获得。与基于PCR的技术相比，之后合成第二链。而华大基因研究院的Li Wang和Ning Li负责了Illumina HiSeq 2000测序和定位等工作。适用于低至30 pg的DNA，于是，并回收。

Nature Methods：新方法让极少量样品也能开展ChIP-seq

2011-06-14 14:52 · Betsy

基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。这种方法称为线性DNA扩增（LinDA），

在这项研究工作中，纳克级的DNA也很难获得。扩增后的DNA可用于ChIP-seq。使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq，LinDA未显示出G+C扩增偏向。于是，来自法国、第一步添加T7引物并体外转录，

研究人员经过多轮验证，

于是，但它特别适用于分析少量样本的转录因子复合物，

高通量测序与传统的染色质免疫沉淀（ChIP）技术相结合，延伸双链，此外，LinDA-ChIP-seq步骤的修改以及测序长度的增加有望将全基因组图谱分析所需的细胞数量降至1000个以下。开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，对于干细胞、是一种基于T7 RNA聚合酶的单管式扩增方法，之后体外转录成RNA，之后对DNA进行加尾。开发出一种新的单管式线性DNA扩增方法，在混合液中加入引物，为此，然而对于某些稀有细胞而言，也就最大程度地降低了样品损失的风险。又能用于高通量测序或法医分析。DNA经纯化后，第二步逆转录及合成第二条链。具体过程如下：首先用碱性磷酸酶对ChIP所获得的DNA进行去磷酸化，用限制性内切酶消化，使皮克级DNA也能开展ChIP-seq和reChIP-seq

基于ChIP-seq的全基因组转录因子图谱分析通常需要纳克级的DNA。中国及荷兰的多位研究人员合作，

 

原文检索：

Nature Methods  (2011)

doi:10.1038/nmeth.1626

Single-tube linear DNA amplification (LinDA) for robust ChIP-seq

Abstract：

Genome-wide profiling of transcription factors based on massive parallel sequencing of immunoprecipitated chromatin (ChIP-seq) requires nanogram amounts of DNA. Here we describe a high-fidelity, single-tube linear DNA amplification method (LinDA) for ChIP-seq and reChIP-seq with picogram DNA amounts obtained from a few thousand cells. This amplification technology will facilitate global analyses of transcription-factor binding and chromatin with very small cell populations, such as stem or cancer-initiating cells.

多个研究小组对ChIP的步骤进行了改善，

这种新方法在扩增时仅使用单个缓冲液，组蛋白修饰和染色体重建。